Диагностика и профилактика эймериоза кур

Эймериоз кур — одно из распространённых заболеваний, представляющих угрозу для птицеводческих хозяйств. В лекции Титовой Татьяны Григорьевны, кандидата ветеринарных наук, заместителя руководителя Северо-Западной испытательной лаборатории ФГБУ «ВНИИЗЖ», рассматриваются основные симптомы заболевания, методики его диагностики и наиболее эффективные меры профилактики.

Диагностика и профилактика эймериоза

Несмотря на все достижения в области разработки новых препаратов, в том числе антикокцидийных, и создание вакцин, эймериоз (или кокцидиоз, как его ещё называют) продолжает оставаться одной из самых значимых паразитарных болезней в птицеводстве. Эймериоз вызывается паразитами рода Eimeria, и для этих паразитов характерна строгая видовая специфичность.

Это означает, что эймерии, поражающие кур, могут заражать только кур. Виды, паразитирующие у индеек, заражают только индеек и не могут передаваться курам или другим видам птиц. Такая же специфика действует для других животных и птиц.

На сегодняшний день у кур хорошо изучено девять видов эймерий, но наиболее экономически значимыми являются:

• Eimeria acervulina
• Eimeria maxima
• Eimeria necatrix
• Eimeria tenella
• Eimeria brunetti

Для индеек наиболее важными с экономической точки зрения считаются:

• Eimeria adenoides
• Eimeria meleagrimitis
• Eimeria gallopavonis
• Eimeria dispersa

Особого внимания заслуживает эймериоз гусей. У гусей известен единственный вид — Eimeria truncata, который развивается в извитых канальцах почек. Все остальные эймерии развиваются в эпителиоцитах кишечника.

Жизненный цикл эймерий и механизм заражения

Эймериоз вызывается простейшими паразитами рода Eimeria, которых также называют кокцидиями. Эти организмы обладают сложным жизненным циклом, включающим три стадии:

1. Шизогония — бесполое размножение внутри клеток кишечника.
2. Гаметогенез — образование половых клеток (гаметоцитов).
3. Спорогония — созревание инфекционных форм паразита во внешней среде.

Первые две стадии (шизогония и гаметогенез) проходят внутриклеточно, поражая эпителиальные клетки кишечника птицы. Третья стадия (спорогония) происходит во внешней среде, где для её завершения необходимы оптимальная температура, влажность и доступ кислорода.

Эймерии попадают в организм птицы с кормом или водой в виде ооцист. Под действием ферментов желудочно-кишечного тракта оболочка ооцисты разрушается, и выходят спорозоиты — подвижные формы паразита. Они проникают в эпителиальные клетки кишечника, где размножаются, увеличиваются в размерах и превращаются в шизонты первой генерации.

После разрушения шизонтов выходят мерозоиты, которые вновь поражают здоровые клетки кишечника. Этот процесс повторяется несколько раз, формируя шизонты второй генерации, из которых выходят новые мерозоиты.

На заключительном этапе жизненного цикла мерозоиты дифференцируются в макро- и микрогаметоциты. В результате оплодотворения образуется зигота, покрывающаяся оболочкой и превращающаяся в ооцисту.

Ооцисты выходят из организма птицы с помётом. Во внешней среде при благоприятных условиях (достаточной влажности, температуре и наличии кислорода) они проходят стадию споруляции, после чего становятся заразными для других птиц.

Строение и устойчивость спорулированных ооцист

Спорулированная ооциста эймерий имеет сложную многослойную оболочку, обеспечивающую её защиту во внешней среде. Внутри ооцисты находятся четыре спороцисты, каждая из которых содержит два спорозоита — инвазионные формы паразита.

Ооцисты эймерий обладают высокой устойчивостью, что позволяет им сохранять жизнеспособность в окружающей среде в течение длительного времени. В отличие от бактерий, они слабо поддаются воздействию дезинфицирующих средств, так как их плотная оболочка защищает внутреннее содержимое.

Как уже отмечалось, эймерии обладают строгой видовой специфичностью, то есть каждый вид паразитирует только на определённом виде птиц и не передаётся другим видам.

Видовая специфичность эймерий и морфологические особенности ооцист

Эймерии обладают строгой видовой специфичностью, то есть заражают только определённые виды птиц. Для кур наиболее актуальны следующие виды паразитов:

• Eimeria necatrix
• Eimeria tenella
• Eimeria brunetti
• Eimeria acervulina
• Eimeria maxima
• Eimeria mitis

На морфологическом уровне виды эймерий различаются по размерам и форме ооцист:

• Eimeria maxima имеет самые крупные ооцисты.
• Eimeria mitis, Eimeria acervulina и Eimeria tenella — наиболее мелкие виды, их ооцисты имеют схожие размеры.
• Eimeria brunetti чуть крупнее мелких видов, но уступает Eimeria maxima.

Определение морфологических особенностей ооцист играет важную роль в диагностике эймериоза и позволяет идентифицировать вид возбудителя, циркулирующего в птицеводческом хозяйстве.

Локализация паразитирования различных видов эймерий

Помимо морфологических различий, виды эймерий отличаются по месту паразитирования в организме птицы:

• Eimeria acervulina — двенадцатиперстная кишка. Относится к слабовирулентным видам.
• Eimeria brunetti — конечный отдел тонкого кишечника, прямая кишка, клоака.
• Eimeria maxima — тонкий кишечник.
• Eimeria necatrix — средний отдел тонкого кишечника и слепые отростки. Заражает птиц старше 87-дневного возраста.
• Eimeria tenella — слепые отростки кишечника.

Важно отметить, что Eimeria necatrix развивается у птицы только в том случае, если слепые отростки кишечника свободны от Eimeria tenella.

К наиболее вирулентные опасным видам эймерий относятся:

• Eimeria brunetti
• Eimeria necatrix
• Eimeria tenella

При тяжёлой инвазии они способны вызывать 100% смертность в стаде.

Патоморфологические изменения при эймериозе

На слайде представлены патоморфологические изменения, характерные для заражения Eimeria acervulina.

При инвазии этим видом эймерий в двенадцатиперстной кишке наблюдаются:

• Белые некротические очаги на слизистой оболочке — характерный признак поражения Eimeria acervulina.
• Повреждения эпителиоцитов кишечника, что приводит к нарушению всасывания питательных веществ.

Понимание этих изменений помогает в диагностике эймериоза на основании патологической картины при вскрытии.

При паразитировании Eimeria maxima в тонком отделе кишечника наблюдаются:

• Кровоизлияния в стенках кишечника.
• Наполнение кишечника кровавым содержимым — один из ключевых признаков тяжёлой инвазии.

При паразитировании Eimeria tenella в слепых отростках кишечника наблюдаются:

• Некроз слизистой оболочки.
• Кровяные сгустки в поражённых участках кишечника.
• Геморрагическое воспаление, приводящее к значительным повреждениям ткани.

При паразитировании Eimeria brunetti в прямой кишке наблюдаются:

• Кровоизлияния на слизистой оболочке — характерный признак инвазии.
• Воспалительные изменения, приводящие к ухудшению состояния птицы.
  
  

Условия споруляции и опасность заражения

Третья стадия жизненного цикла Eimeria протекает во внешней среде.

Факторы, влияющие на споруляцию:

• Температура — при неблагоприятных температурах процесс замедляется или прекращается.
• Кислород — недостаток кислорода приводит к гибели ооцист.
• Влажность — необходима для завершения процесса споруляции.

Опасность для птиц. Только спорулированные ооцисты представляют угрозу, так как только они способны вызвать заболевание при попадании в организм птицы.

Влияние температуры на процесс споруляции ооцист

Споруляция ооцист Eimeria во внешней среде зависит от температуры. Оптимальные условия способствуют быстрому развитию, однако при температуре выше 30°C этот процесс замедляется или полностью прекращается. Аналогичная ситуация наблюдается и при низких температурах, которые также негативно влияют на созревание ооцист.

Помимо морфологических особенностей и локализации в организме птицы, виды Eimeria различаются по уровню репродуктивного потенциала.

Наиболее высокой продуктивностью обладает Eimeria acervulina. При заражении птицы 16 000 ооцист, выход из организма составляет 16 миллионов. Это означает, что каждая ооциста способна дать до 1000 новых ооцист, что значительно повышает скорость распространения инфекции в популяции птицы.

Для сравнения, у Eimeria brunetti этот показатель ниже — на порядок меньше, что свидетельствует о более ограниченном распространении данного вида по сравнению с Eimeria acervulina.

Репродуктивный потенциал Eimeria maxima сопоставим с Eimeria acervulina, однако последняя относится к слабовирулентным видам. Это подтверждается экспериментальными данными: даже высокие дозы заражения не вызывают гибель птицы.

На представленных данных прослеживается закономерность: чем выше заражающая доза ооцист, тем ниже их выход из организма. Это означает, что для максимального распространения инфекции заражающая доза должна быть оптимальной.

Eimeria tenella по репродуктивному потенциалу находится примерно на том же уровне, что и Eimeria cervulina.

При заражении 16 300 ооцистами кокцидий на голову выход ооцист составил почти 18 миллионов. Однако при этом наблюдалась гибель зараженной птицы: из десяти особей две погибли. Это свидетельствует о высокой вирулентности Eimeria tenella.

На данном слайде представлен репродуктивный потенциал Eimeria necatrix. Он находится примерно на том же уровне, что и у Eimeria brunetti, в максимальных значениях.

Таким образом, можно сделать вывод, что наибольший репродуктивный индекс имеют Eimeria maxima и Eimeria tenella.

Формы течения болезни

Эймериоз — это паразитарное заболевание, относящееся к группе паразитарных болезней. Как и для любой инфекции, для эймериоза характерны острое, подострое и субклиническое течение.

При остром течении эймериоза у птицы наблюдается угнетение, отказ от корма, стремление сбиваться в группы и прижиматься к теплу. При этом птицы выглядят сонливыми.  

Острый период заболевания может завершиться гибелью птицы, причем летальность в некоторых случаях достигает 100%.

В настоящее время, благодаря широкому применению профилактических препаратов, эймериоз чаще всего протекает в субклинической форме. В этом случае явные клинические признаки отсутствуют, однако снижаются привесы, ухудшается конверсия корма, и общее состояние птицы может быть нарушено.  

Для диагностики субклинического эймериоза необходимо учитывать привесы и конверсию корма, проводить анализ подстилки, осуществлять выборочный убой подозрительной птицы с последующим макро- и микроскопическим исследованием кишечника, а также контролировать выделение ооцист кокцидий.

Макроскопический анализ кишечника является одним из методов диагностики эймериоза. Лабораторные исследования проводят в соответствии с ГОСТ 25383, где подробно описан порядок отбора материала, перечень необходимого оборудования и все манипуляции, позволяющие подтвердить диагноз.

Однако макроскопический анализ кишечника не дает окончательного диагноза эймериоза. Он может лишь помочь в диагностике и предположить, какой вид Eimeria присутствует в птицеводческом хозяйстве.

Так, патологоанатомические изменения, характерные для Eimeria tenella, — увеличенные слепые отростки кишечника, заполненные кровавым содержимым — позволяют предположить, что заболевание вызвано именно этим видом. Наличие некротических очагов в области двенадцатиперстного отдела кишечника указывает на возможное присутствие Eimeria acervulina.

Еще одним методом диагностики эймериоза является микроскопический анализ кишечника. Он позволяет выявить внутриклеточные стадии развития Eimeria, включая шизонты.

На представленном слайде можно увидеть изображения шизонтов — округлых структур, заполненных мерозоитами.

Кроме того, с помощью микроскопического анализа можно обнаружить ооцисты Eimeria в кишечнике. Однако в кишечнике они еще не спорулированные, поэтому выглядят как округлые образования с плотным содержимым, иногда отходящим от стенок.

При постановке диагноза эймериоза обязательно проводится исследование помета или фекалий птицы.  

Анализ помета может проводиться как качественным, так и количественным методом. Количественный метод позволяет определить концентрацию ооцист кокцидий в одном грамме помета.  

Выявление до 50 000 ооцист в одном грамме помета, как правило, не оказывает значимого влияния на зоотехнические показатели. Однако если концентрация ооцист достигает 300 000 на грамм, это уже свидетельствует о негативном воздействии на привесы, конверсию корма и общее состояние птицы. В тяжелых случаях возможно даже развитие летальных исходов.

Формирование иммунитета

Эймериозы относятся к паразитарным заболеваниям, однако при заражении развивается клеточно-гуморальный иммунитет. Этот иммунитет не является стерильным и обладает видоспецифичностью. Это означает, что при инфицировании Eimeria acervulina иммунный ответ формируется только против данного вида.

Если птица повторно заразится другим видом, таким как Eimeria tenella или Eimeria maxima, она заболеет, поскольку иммунитет не обеспечит защиту от этих видов эймерий.

Для формирования продолжительного иммунитета необходима реинвазия. Все эндогенные стадии развития кокцидий должны завершаться внутри организма птицы, чтобы иммунный ответ был полноценным и обеспечивал защиту от повторного заражения тем же видом Eimeria.

Меры по профилактике и лечению эймериоза

Важнейшими задачами в борьбе с эймериозом являются предотвращение заражения птицы, особенно до достижения ею эндогенных стадий развития кокцидий, а также поддержание иммунной безопасности. Эти меры делятся на две основные группы.

Первая группа направлена на недопущение попадания ооцист кокцидий из внешней среды в птичник. Для этого необходимо строго соблюдать комплекс ветеринарно-санитарных мероприятий, включая использование специализированных средств для дезинвазии (очистки и дезинфекции) внешней среды и оборудования птичников. Ооцисты кокцидий обладают высокой устойчивостью к внешним факторам благодаря своим защитным оболочкам, что делает их достаточно стойкими в окружающей среде.

Кроме того, следует учитывать, что современные химические препараты против кокцидий (например, против ооцист) имеют ограниченную эффективность. Однако они все же необходимы для снижения концентрации ооцист в окружающей среде, а также для уменьшения бактериальной нагрузки. Это важно, потому что кокцидиоз часто вызывает ослабление иммунной системы птицы, что может привести к развитию вторичных бактериальных инфекций, таких как клостридиозы или колибактериозы. Нарушение барьерной функции кишечника, обусловленное кокцидиями, увеличивает проницаемость сосудов и способствует проникновению бактериальных и вирусных инфекций.

Ключевым моментом является соблюдение всего комплекса ветеринарно-санитарных мероприятий, включая организацию санпропускников для предотвращения переноса инфекций между птичниками через оборудование и предметы ухода. Также необходимо помнить, что предметы ухода и оборудование могут быть источниками переноса ооцист, и люди, обслуживающие птиц, должны следить за личной гигиеной и правилами дезинфекции.

Что касается удаления ооцист, то высокие температуры являются эффективным средством борьбы с кокцидиями. Однако создать такие условия в птичнике бывает сложно, особенно если речь идет о больших масштабах. В таких случаях требуется тщательное планирование и применение других методов дезинфекции и профилактики.

Вторая группа мероприятий по профилактике и лечению эймериоза кур включает использование химических препаратов, которые замедляют или полностью подавляют развитие паразитов. На сегодняшний день антикоксидийные препараты можно разделить на три основные группы:

1. Химически синтезированные препараты (так называемые «химики»). Это средства, которые воздействуют на жизненный цикл кокцидий, тормозя их развитие и размножение.

2. Полиэфирные и анафорные антибиотики. К этим препаратам относятся:

• Моновалентные препараты: такие как монензин, норазин, салиновицин. Эти вещества воздействуют на один из этапов развития кокцидий.
• Гликозированные моновалентные препараты: например, мадромицин, семдромицин. Они обладают схожим механизмом действия, но их химическая структура и эффективность могут отличаться.
• Дивалентные ионофоры: такие как лазолоцит. Эти препараты воздействуют на ионные каналы в клетках кокцидий, нарушая их обмен веществ.

3. Комбинированные препараты, которые включают в своем составе как химические компоненты, так и ионофорные антибиотики. Применение таких препаратов позволяет снизить риски, связанные с использованием отдельных препаратов. Комбинированные средства могут обеспечивать более широкое и комплексное воздействие на паразитов. В некоторых случаях они оказываются более эффективными, чем препараты, применяемые поодиночке, что связано с синергизмом их действия — усилением эффекта от комбинации.
Использование комбинированных препаратов также позволяет уменьшить вероятность возникновения устойчивости у кокцидий, что является важным аспектом в борьбе с этим заболеванием.

На этом слайде представлены особенности применения и механизм действия химических антикокцидийных препаратов. Остановимся на некоторых из них.

Никарбазин — это препарат, который используется с 60-х годов прошлого века и является одним из немногих, в отношении которого кокцидии, циркулирующие в хозяйствах, остаются чувствительными. Это делает его эффективным средством для борьбы с кокцидиозом. Однако важно отметить, что никорбазин не рекомендуется применять в летний период, поскольку в жаркую погоду он может ухудшить состояние птицы.

Механизм действия никарбазина заключается в том, что он увеличивает тепловую продукцию птицы, что может приводить к перегреву и тепловому стрессу. Применение препарата в условиях высокой температуры вызывает повышение частоты сердечных сокращений, что в свою очередь может привести к гибели птицы. В различных исследованиях было показано, что в жаркое время года никорбазин может стать причиной летального исхода, поэтому его использование в летнюю жару должно быть строго ограничено.

Ампролиум, в свою очередь, можно отнести к препаратам первой помощи. Этот препарат эффективен против множества видов кокцидий и может использоваться при экстренных ситуациях, когда необходимо быстро стабилизировать состояние птицы в случае возникновения эймериоза. Однако ампролиум не рекомендуется вводить в ротационные программы профилактики, поскольку его действие ограничено и он не является препаратом длительного применения. Это средство следует использовать исключительно для оказания первой помощи, а не как основное средство борьбы с кокцидиозом.

На данном слайде представлены особенности применения и механизм действия ионофорных антибиотиков, таких как монензин, наразин и салиномицин. Эти препараты относятся к одной группе и обладают схожим механизмом действия, который заключается в их способности воздействовать на ионные каналы в клетках кокцидий, нарушая их обмен веществ и приводя к гибели паразитов.

Когда вы формируете программу ротации препаратов для борьбы с кокцидиозом, важно учитывать, что не рекомендуется заменять препараты с схожим механизмом действия. Например, если в вашей программе используется салиномицин, не следует заменять его на наразин или монензин, так как эти препараты обладают одинаковым действием. Такой подход может привести к недостаточной эффективности, поскольку кокцидии могут развить устойчивость к препаратам с одинаковым механизмом воздействия.

Также стоит отметить, что мадурамицин и семдурамицин — это препараты, которые также обладают схожим механизмом действия с вышеупомянутыми средствами и должны использоваться с учетом их особенностей. Включение этих препаратов в программу лечения должно происходить с осторожностью, чтобы избежать чрезмерного давления на кокцидии с одним типом механизма действия.

Антикокцидийные препараты, помимо того, что делятся по механизму действия и составу, также подразделяются на два типа в зависимости от их влияния на развитие иммунитета у птицы.

1. Препараты, препятствующие развитию иммунитета. Эти препараты оказывают влияние на иммунную систему птицы, замедляя или препятствуя её полноценному развитию, что может негативно сказаться на способности организма к долгосрочной защите от инфекции. Ионофорные антибиотики, такие как монензин, наразин и салиномицин, относятся к этой группе. Они эффективно борются с кокцидиями, но их использование может подавлять развитие естественного иммунитета у птицы.

2. Препараты, не препятствующие развитию иммунитета. К таким препаратам относятся ампролиум и никарбазин. Эти средства не оказывают негативного воздействия на иммунную систему птицы, что позволяет ей развивать стойкий иммунитет к кокцидиозу. Ампролиум, например, используется как препарат первой помощи, а никарбазин активно применяется в профилактике кокцидиоза, не нарушая природный процесс формирования иммунного ответа.

Антикокцидийные препараты также различаются по механизму действия, и их можно классифицировать по воздействию на различные биохимические процессы в организме паразитов. Эти препараты могут влиять на биосинтез витаминов, замещать витамины или ферменты, что нарушает нормальную жизнедеятельность кокцидий и способствует их уничтожению.

1. Препараты, ингибирующие процессы биосинтеза. Эти препараты вмешиваются в биохимические процессы, нарушая синтез необходимых веществ для жизни и развития кокцидий, что ведет к их гибели.

2. Препараты, замещающие витамины. Примером таких препаратов является ампролиум, который замещает витамин B1 (тиамин). Тиамин является важным для жизнедеятельности кокцидий, так как они зависят от его присутствия для нормального обмена веществ. Ампролиум блокирует его усвоение, что нарушает метаболизм кокцидий, препятствуя их дальнейшему развитию.

3. Препараты, замещающие ферменты. Этот механизм действия предполагает вмешательство в ферментативные процессы в клетках кокцидий, нарушая их способность к нормальному функционированию и размножению.

В настоящее время в большинстве хозяйств наблюдается проблема циркуляции штаммов кокцидий, которые обладают резистентностью или устойчивостью к антикокцидийным препаратам. Это стало следствием неправильного подхода к составлению ротационных программ и, как правило, игнорирования ключевых принципов профилактики.

Основные три золотых правила ротации препаратов, соблюдение которых помогает предотвратить развитие устойчивости паразитов, включают:

1. Не использовать один и тот же препарат слишком долго. Применение одного и того же средства в течение длительного времени способствует тому, что кокцидии развивают устойчивость к этому препарату.

2. Необходимо делать перерывы во времени. Прерывание применения определённого препарата даёт возможность «восстановить» чувствительность паразитов, так как они не могут развивать устойчивость к препарату, если его используют с перерывами.

3. Чередовать препараты из разных классов. Это предотвращает развитие устойчивости, поскольку препараты с разными механизмами действия воздействуют на кокцидий по-разному. Комбинированное использование препаратов разных классов существенно снижает риск появления устойчивых штаммов.

Пример из практики подтверждает важность соблюдения этих правил. Недавно в лабораторию поступили пробы с подозрением на кокцидиоз. Когда специалисты узнали, какой препарат использовался для профилактики, выяснилось, что он применялся в хозяйстве в течение 10 лет без изменений. В результате, препарат перестал действовать на ту популяцию кокцидий, которая циркулировала в хозяйстве, что привело к серьёзным проблемам: падежу птицы, снижению привесов и экономическим потерям.

Этот случай ярко иллюстрирует, как неправильное применение антикокцидийных препаратов может привести к развитию устойчивости у паразитов и негативным последствиям для хозяйства.

Антикокцидийные препараты на основе растительных экстрактов

Антикокцидийные препараты на основе растительных компонентов в настоящее время получают широкое распространение в странах Запада. Эти препараты оказываются действенными не только против определённых видов кокцидий, но и против их смесей, что является важным аспектом в борьбе с кокцидиозом у птиц.

Такие препараты могут быть особенно перспективными в будущем, особенно в свете ужесточения требований к пищевой безопасности и контроля за остаточными количествами препаратов в продуктах питания, полученных от птицы. В условиях увеличивающихся требований к экологической чистоте и отсутствию химических остатков в продуктах, растительные препараты могут стать важной альтернативой синтетическим химическим средствам.

В России пока не производятся такие препараты, однако компания ООО «ПТК «АйБиЭс» осуществляет поставки  растительного противоэймериозного препарата Norponin®ХО2, произведённого компанией «НОР-ФИД» (Бокузе, Франция). Этот препарат, как и другие растительные средства, обладает высокой эффективностью в борьбе с кокцидиозом и может стать перспективным средством в условиях ужесточения требований к пищевой безопасности.

Надеюсь, что в будущем подобные антикокцидийные препараты на растительной основе будут разработаны и в Российской Федерации, и мы сможем их успешно применять, учитывая их преимущества для здоровья птицы и соблюдения высоких стандартов пищевой безопасности.

Меры по предотвращению развития резистентности у коцидий

Длительное применение одного и того же антикокцидийного препарата может привести к развитию устойчивости у кокцидий, что, в свою очередь, вызывает снижение чувствительности паразитов к препарату. Это чревато не только гибелью птицы, но и снижением привесов, а также ухудшением общей продуктивности. Чтобы избежать таких последствий, необходимо применять комплекс мер.

1. Предотвращение заноса устойчивых штаммов кокцидий.
Первое и важнейшее мероприятие — это предотвращение заноса в хозяйство устойчивых к антикокцидийным препаратам кокцидий. Для этого необходимо соблюдать все ветеринарно-санитарные мероприятия, а также проводить ротацию препаратов. Препараты для профилактики кокцидиоза должны регулярно заменяться на средства с неродственным механизмом действия.

2. Ротация препаратов.
Невозможно в течение 10 лет использовать один и тот же препарат, как в приведённом примере, так как это приведёт к утрате его эффективности. Важно внедрять челночную программу — ротационное применение препаратов, что снижает риск развития устойчивости у кокцидий. Например, в стартовом корме можно использовать химический препарат, а в ростовом корме — ионофорный антибиотик. Также существуют программы, в которых оба этапа профилактики включают химические препараты или два ионофорных антибиотика.

3. Применение препаратов по челночной программе.
Ротационные схемы с никарбазином и ионофорными антибиотиками показаны для марта и мая, а в летние месяцы предпочтительно применять только ионофорные антибиотики.

4. Комбинированные препараты.
На рынке имеются комбинированные препараты, которые сочетают в своём составе никарбазин и салиномицин, или никарбазин и монензин. Эти комбинации усиливают действия компонентов и снижают неблагоприятные эффекты, которые могут возникнуть при использовании препаратов по отдельности.

5. Вакцинация.
Вакцинация с применением антикокцидийных препаратов также может быть эффективным методом профилактики кокцидиоза. Вакцину начинают применять с первых дней жизни, а начиная с 14 дня, птицам начинают давать антикокцидийные препараты в профилактических целях. 

6. Применение растительных антикокцидийных препаратов.
Применение природных растительных антикокцидийных препаратов является перспективным направлением в борьбе с кокцидиозом. Эти препараты обладают несколькими преимуществами: они безопасны для птицы, не вызывают остаточных следов в продукции и могут быть использованы как альтернатива химическим средствам. К сожалению, в настоящее время такие препараты в России не производятся, однако их активно разрабатывают за рубежом. Например, Norponin®ХО2, препарат, производимый компанией «НОР-ФИД» (Бокузе, Франция), уже успешно используется в некоторых странах. 

7. Вакцинация против эймериоза.
Важно помнить, что для успешной вакцинации и реинвазии вакцинных штаммов необходимо поддерживать оптимальные условия в птичнике (не допускать высыхания или избыточного увлажнения подстилки), чтобы избежать влияния на споруляцию и реинвазию.

8. Использование пробиотиков и кормовых добавок.
Применение пробиотиков и других кормовых добавок также может быть полезным. Исследования показывают, что пробиотики могут модифицировать энтероциты кишечника птицы, делая их нечувствительными к проникновению мерозоитов и спарозоитов кокцидий. Это один из способов дополнительной профилактики кокцидиоза.

9. Контроль чувствительности.
Постоянный мониторинг чувствительности кокцидий к препаратам, а также регулярный контроль поголовья — важнейшие элементы успешной профилактики. Мониторинг должен включать определение количества и видового состава паразитов в птичнике, что позволяет точно отслеживать циркулирующие штаммы и применять соответствующие меры.

Вакцины и пути их введения

Вакцины в настоящее время подразделяются на аттенуированные, неаттенуированные и субъединичные. Однако субъединичные вакцины применяются довольно редко, в основном у нас используются аттенуированные и неаттенуированные вакцины. Все вакцины являются живыми.

На данном слайде приведены названия вакцин и виды птицы, для которых показано применение тех или иных препаратов. 

Аттенуация — это процесс ослабления штаммов, который обычно проводится на куриных эмбрионах. Неаттенуированные штаммы — это штаммы, полученные из природы, которые уже ослаблены в условиях окружающей среды.

Пути введения вакцин могут быть совершенно разными. Это могут быть интраокулярные инъекции, распыление в инкубаторе, распыление на корм, а также применение в желточный мешок и другие методы. На мой взгляд, распыление в инкубаторе — это достаточно простой и эффективный способ вакцинации птицы в первые дни жизни. 

Важно понимать, что именно в первые дни жизни птица заражается ооцистами кокцидий, и по мере повторения циклов развития возбудителя, количество ооцист в подстилке увеличивается. Поэтому применение вакцинных препаратов должно начинаться с первых дней жизни птицы, чтобы предотвратить распространение и развитие кокцидиоза.

Титова Татьяна Григорьевна, кандидат ветеринарных наук, заместитель руководителя Северо-Западной испытательной лаборатории ФГБУ «ВНИИЗЖ». Лекция проведена в рамках курсах «Актуальные схемы вакцинопрофилактики в промышленном птицеводстве».